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微流控器官和細胞培養芯片
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微流控器官和細胞培養芯片

SynALI氣液界面肺模型(微流控器官芯片)

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這種帶有中央腔室和側翼微通道的器官芯片可以創建模仿肺部結構的氣液界面模型。被內皮細胞制成的脈管圍繞的肺上皮細胞功能化的微流控芯片,可以重現典型的體內氣液界面。


SynVivo的SynALI是一種新的氣液界面模型(氣液界面微加工的多孔結構纖毛氣道細胞 - ALI),模仿了肺部的結構。該微流控芯片是光學透明的,被上皮細胞功能化,該上皮細胞被由內皮細胞組成的血管系統圍繞。這種結構保持了通過氣道細胞的空氣流體(ALI),從而形成了運輸粘液的呼吸管:這是粘膜纖毛清除的現象。


借助這種完全創新的微流控芯片,您可以實時觀察和量化許多參數,例如細胞的形態,氣道的結構,細胞之間的相互作用以及氣道的不同功能(黏液運輸,ciliary beating)和治療改善。


● 現實的氣道結構和環境

● 體內血液動力學切應力

● 實時可視化細胞和屏障功能,包括黏液,ciliary beating,免疫細胞相互作用和治療性篩選。

● 穩健易用的協議


要進行SynALI實驗,有兩種套裝規格可用(套裝不包括建立氣液界面所需的驅動泵):


起始套裝

● 10個SynALI芯片-IMN2線性(3μm狹縫)

● 配件包含導管,夾具,針頭和注射器

● 氣動啟動裝置(用于導管以去除空氣)


實驗套裝

● 10個SynALI芯片-IMN2線性(3μm狹縫)

● 配件包含導管,夾具,針頭和注射器


如果您只想用芯片的話,可以單獨訂購芯片。


規格參數

IMN2線性芯片

● 外通道寬度:200μm

● 中央通道寬度:500μm

● 深度:100μm

● 形程寬度:50μm

● 孔徑:3μm


SynALI_b.jpg


應用

氣道模型可以通過內皮和上皮細胞的共培養來創建,肺泡三培養模型可以同時使用內皮、上皮和成纖維細胞。


提供氣液界面模型技術手冊,請聯系我們索要。


已經開發出來的這些共培養協議可建立與3D肺組織連通的真正的血管單層。在這些器件中生長的人類細胞保留了與真實組織中相似的生物學表型。領先的研究人員已經證實,與使用常規培養技術培養的細胞相比,這些芯片中生長的細胞能更準確地反應體內發現的細胞行為。


與在靜態條件下進行的孔板測試不同,這些芯片可再現用于評估細胞-藥物細胞-細胞相互作用現實動態條件,從而為研究和闡明成功與失敗的機制提供準確的體外平臺。與體內動物研究相比,它們可以在受控環境中進行實驗的實時可視化和分析。


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外通道之一中的融合內皮細胞播種密度的示例


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播種后立即具有肺上皮細胞的微流控器件的示例


SynALI-mucus-formation-and-biomarker-staining.jpg

Mucus formation and biomarker staining: A) - C) Confluent co-culture of endothelial and epithelial cells; mucus formation and staining of biomarkers in epithelial cells. D) and E) Biomarker staining for tight junction markers (VE-Cadherin and ZO-1) in endothelial cells.


出版文獻

Liu Z. et al., Co-cultured microfluidic model of the airway optimized for microscopy and micro-optical coherence tomography imaging, Biomedical Optics Express 2019 (Download)



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(a) The ALI device to develop the air-liquid interface across the cells. The air (or epithelial) channel is separated from two fluid (basolateral) channels by pores. Right panel shows conceptual drawing of the proposed orientation of the cells when seen from top (above) and a cross-section (below). (b) Bright Field image of the fabricated device without cells and the magnified view showing the pores. (c) Fabricated device bonded to the glass coverslip with inserted tubing for perfusion. 


Application_air_liquid_interface_model_lumen.jpg

(a-c). Phase contrast imaging of HBE cells in the center channel: (a) Directly after seeding, (b) attachment of cells after 24 hours, and (c) 100% confluence after 7 days of culture. (d) Live/dead staining. (e) Cross-sectional view of 3-D reconstructed confocal image (10X mag.). Cell culture is co-stained with Plasma Membrane Orange and Calcein Green. (f). En face of Fig. 3(e).



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